巴斯德吸管（巴氏吸管/滴管）是实验室很常用的移液工具，分一次性塑料巴斯德吸管和玻璃巴斯德吸管，使用方法和注意事项略有差异，核心是精准移液、防污染、防交叉感染。
一、基本结构
一次性塑料巴斯德吸管：一体成型，带吸球（乳胶/硅胶）+细管+尖端，容量多为1mL、2mL、3mL，带刻度（部分）。
玻璃巴斯德吸管：玻璃细管+乳胶吸球，可重复使用，需配套洗耳球/吸球。
二、通用使用方法（以一次性塑料吸管为例）
1.准备
检查包装：确认未破损、未过期、无菌（无菌操作时）。
选择规格：根据移液体积选对应容量（如1mL、2mL）。
佩戴防护：手套、护目镜、实验服，避免液体接触皮肤/眼睛。
2.吸取液体
手持吸管中部，避免触碰尖端和吸球连接处。
用拇指和食指轻捏吸球，排出内部空气。
将尖端垂直浸入液面下2–5mm（不要太深，防止吸球污染；不要太浅，防止吸空）。
缓慢松开吸球，液体被吸入管内，液面不要超过吸球连接处（防止液体进入吸球，造成污染/腐蚀）。
如需定量：
有刻度：吸至目标刻度线（视线与刻度线水平，读取凹液面最低点）。
无刻度：按经验/滴数控制（1mL≈20滴，仅供粗略估算）。
3.释放液体
将吸管尖端垂直/倾斜对准接收容器内壁（避免溅出）。
轻捏吸球，缓慢释放液体，避免快速挤压导致飞溅。
如需逐滴释放：轻捏吸球，控制力度，使液体逐滴落下。
释放完毕后，将吸管尖端轻靠容器内壁，吸走残留液滴（减少误差）。
4.结束操作
一次性吸管：直接放入实验废弃物桶（锐器盒/耐穿刺袋），严禁重复使用。
玻璃吸管：
先将残留液体排入废液缸，再用清水冲洗。
用铬酸洗液/洗涤剂浸泡清洗，蒸馏水冲洗3次以上。
烘干/晾干，备用；无菌操作前需高压灭菌。
三、玻璃巴斯德吸管特殊操作（重复使用）
安装吸球：将玻璃管上端湿润（便于安装），轻轻旋入乳胶吸球，确保密封不漏气。
吸取：同塑料吸管，严禁用嘴直接吸液（剧毒、腐蚀、生物样品风险很高）。
清洗灭菌：
先吸清水冲洗3–5次，再吸75%乙醇/消毒液冲洗，最后蒸馏水冲净。
干燥后，干热灭菌（160℃，2h）或高压蒸汽灭菌（121℃，20min）。
灭菌后存放于干燥器/无菌盒，避免二次污染。
四、核心注意事项（必看）
1.防污染（最关键）
一管一用：一次性吸管严禁重复使用；玻璃吸管不同样品/试剂必须更换/灭菌后再用，防止交叉污染。
禁止混用：吸取过酸、碱、有机溶剂、生物样品的吸管，不可直接吸取其他试剂。
无菌操作：微生物实验、细胞培养时，必须用无菌巴斯德吸管，操作在超净台/无菌室进行，避免触碰非无菌区域。
2.安全操作
严禁口吸：所有液体（包括水）禁止用嘴直接吸取，必须用吸球/移液器，防止中毒、感染、腐蚀。
防溅防漏：
吸取挥发性、腐蚀性、有毒液体（如浓酸、浓碱、有机溶剂、病原微生物）时，在通风橱内操作。
吸液时不要超过吸球连接处，防止液体进入吸球，导致吸球腐蚀、液体倒吸污染。
释放时轻捏慢放，避免液体飞溅到皮肤、眼睛或实验台。
防破碎：玻璃吸管轻拿轻放，避免碰撞；破碎后用镊子/戴手套清理，放入锐器盒。
3.精准移液
视线水平：读取刻度时，视线与凹液面平齐，避免俯视/仰视造成误差。
垂直吸放：吸取和释放时尽量垂直，减少管壁残留；释放时靠壁，减少误差。
避免气泡：吸液时缓慢松开吸球，防止产生气泡；如有气泡，轻弹管壁排出后再移液。
定量精度：巴斯德吸管为粗略移液工具（误差±5%–10%），高精度定量（如<1%误差）必须用移液器/移液管。
4.储存与维护
一次性吸管：未使用的存放在干燥、阴凉、避光处，避免高温、潮湿。
玻璃吸管：
清洗后彻底干燥，防止发霉、残留液体腐蚀。
灭菌后尽快使用，超过保质期需重新灭菌。
吸球定期检查，如有老化、开裂、漏气，及时更换。
5.特殊液体操作
挥发性液体（如乙醚、乙醇）：在通风橱内操作，吸液后快速密封，避免挥发。
粘稠液体（如甘油、血清）：选择粗尖端吸管，缓慢吸放，必要时加热（不超过60℃）降低粘度。
生物样品（如细胞悬液、血液）：轻柔操作，避免剧烈挤压导致细胞破裂；使用后按生物安全规范处理。
酸碱/有机溶剂：
塑料吸管：避免长期接触强氧化剂（如H₂O₂）、强有机溶剂（如甲苯、二甲苯），防止吸管变形、溶解。
玻璃吸管：耐酸碱，但避免骤冷骤热（如热酸直接用冷水冲），防止炸裂。
五、总结
巴斯德吸管的核心使用原则：一管一用防污染，轻捏慢放防飞溅，严禁口吸保安全，视线水平求精准。
日常粗略移液、滴加、转移：首选一次性塑料巴斯德吸管，方便快捷、防污染。
无菌、重复使用、特殊试剂：选玻璃巴斯德吸管，严格清洗灭菌。
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更新时间：2026-01-26
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